Teintures Et Extraits Botaniques : Production Artisanale À Usage Cosmétique Et Phytothérapeutique

Par DUKE SOUZA

Cette œuvre propose une exploration complète et approfondie des teintures et extraits botaniques, révélant les principes, les processus et les applications qui transforment la matière végétale en préparations concentrées d'une grande puissance thérapeutique et énergétique. Alliant clarté scientifique, compréhension phytochimique et savoir-faire artisanal, le texte explique comment les solvants, les constituants végétaux, les conditions environnementales et les méthodes d'extraction influencent la composition finale, l'efficacité et les qualités vibratoires de chaque préparation.

Le contenu examine en détail la manière dont l'alcool, la glycérine, l'eau, les huiles et les solutions acides dissolvent et préservent les alcaloïdes, terpènes, flavonoïdes, résines, tanins et autres composés bioactifs. Des facteurs essentiels tels que la polarité du solvant, la température, la durée de macération et la sélection botanique y sont analysés, démontrant comment chaque variable affecte l'intensité, la stabilité et la spécificité de l'extrait. En présentant les caractéristiques structurelles et fonctionnelles des racines, feuilles, fleurs, écorces et graines, l'ouvrage montre comment chaque partie de la plante offre des profils thérapeutiques uniques.

Une section importante est consacrée à la production pratique de teintures et d'extraits destinés à des objectifs précis. Des directives claires et rigoureuses sont fournies pour les formulations dédiées à l'équilibre émotionnel, au soutien immunitaire, au nettoyage énergétique, à l'ancrage, à la concentration, à l'alignement des chakras, à la connexion spirituelle et au bien-être général. Sont également abordées des notions fondamentales telles que les dosages, les précautions de sécurité, les méthodes de conservation, la calibration des solvants, les proportions d'extraction et les synergies phytochimiques. Le texte souligne également l'importance de l'intention consciente et de la qualité de l'environnement de travail, montrant comment le processus lui-même peut devenir une pratique disciplinée renforçant la cohérence énergétique du produit final.

Plus qu'un guide, cette œuvre constitue une référence avancée pour ceux qui souhaitent comprendre la relation profonde entre les plantes, la chimie et les champs subtils. Elle intègre science botanique, technique artisanale et sensibilité intuitive, guidant le lecteur dans la création d'extraits à la fois matériellement efficaces et énergétiquement harmonisés.

• Langue: Français
• Éditeur: DUKE EMPREENDIMENTOS
• Date de sortie: 13 déc. 2025
• ISBN: 9798232829520

Aperçu du livre

Chapitre 1 : Notions fondamentales de botanique et sélection des plantes

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L'identification correcte commence par la reconnaissance du nom scientifique valide de l'espèce et de son auteur, en évitant les synonymes obsolètes et les noms communs ambigus qui varient selon les régions. L'utilisation systématique de la nomenclature binomiale guide la sélection des échantillons et prévient les confusions accidentelles, notamment en présence d'espèces ou de genres morphologiquement similaires présentant des caractères communs. La confirmation doit inclure la comparaison avec les clés d'identification botaniques, les descriptions taxonomiques et les illustrations détaillées publiées dans les flores régionales, ainsi que la comparaison avec les spécimens de référence conservés en herbier, lorsqu'ils sont disponibles. La description de l'habitat, du type de sol, de l'altitude approximative et de la répartition sur le terrain apporte des informations contextuelles précieuses, car les habitudes écologiques contribuent à confirmer l'identification lorsque les caractères végétatifs sont incomplets.

L'examen macroscopique oriente le tri initial et requiert une attention particulière aux caractéristiques stables telles que la nervation foliaire , la phyllotaxie, la présence de stipules, la texture et les marges des feuilles, le type d'indumentum, l'architecture des branches et l'insertion de l'inflorescence. Pour les organes reproducteurs, le nombre et la disposition des sépales et des pétales, le nombre d'étamines, la morphologie du gynécée et la forme du fruit sont généralement déterminants. Concernant les structures souterraines, il est crucial de différencier une racine pivotante, un rhizome ou un tubercule, car l'anatomie et les réserves chimiques varient considérablement entre ces organes. Pour l'écorce et le bois, la couleur de l'aubier et du duramen, l'odeur dégagée à la coupe, la disposition des rayons médullaires et la présence de canaux sécréteurs permettent d'authentifier l'espèce.

La confirmation microscopique renforce la certitude de l'identification, notamment lorsque le matériel est sec ou fragmenté. Les préparations microscopiques temporaires de poudre végétale révèlent des éléments diagnostiques tels que les types de trichomes, les épaississements du xylème, la disposition des stomates, les cristaux d'oxalate de calcium, les grains d'amidon et la présence de canaux sécréteurs. Dans les extraits d'écorce, la visualisation des fibres gélatineuses, des scléréides et du périderme stratifié permet de distinguer les espèces étroitement apparentées. Dans les graines et les fruits pulvérisés, l'ornementation du tégument et la morphologie de l'embryon fournissent des indications pertinentes. En cas de doute persistant, des tests de coloration chimique simples, tels que les réactions avec des réactifs spécifiques pour les alcaloïdes ou les phénols, constituent un premier examen, à condition d'être interprétés comme un élément d'appui et non comme le seul critère d'identification.

Une documentation rigoureuse est essentielle à l'identification et comprend la photographie de la plante dans son environnement, des gros plans des feuilles (faces supérieure et inférieure), des fleurs sous différents angles et des fruits en coupe transversale, toujours avec une échelle métrique visible. Les étiquettes doivent indiquer la date, les coordonnées approximatives (lorsque cela est possible en toute sécurité), le nom du collecteur, les conditions climatiques et le stade phénologique observé . La préparation d'un spécimen botanique, si possible, garantit la traçabilité et permet des réévaluations ultérieures par des spécialistes. Pour les collections issues de sa propre culture, la conservation d'un registre de l'origine des semences ou des plants, du fournisseur, du lot et des certifications contribue à la standardisation et à la reproductibilité des extraits.

L'identification des parties de la plante présentant un intérêt pour l'extraction nécessite la séparation, soit sur le terrain, soit peu après la récolte, des organes les plus riches en constituants recherchés. Les jeunes feuilles ont généralement une teneur plus élevée en chlorophylle et en certains flavonoïdes, tandis que les feuilles pleinement développées stabilisent le profil phénolique et réduisent la variabilité. Les fleurs concentrent les composés volatils et les pigments sensibles, ce qui exige une manipulation soigneuse afin de préserver les structures glandulaires. Les fruits immatures et mûrs diffèrent par leur teneur en acides organiques, en sucres et en terpènes ; le choix entre les deux doit être adapté à l'objectif de la préparation envisagée. L'écorce fraîchement récoltée présente un profil distinct de celui de l'écorce mature, avec des variations dans la proportion de tanins et de composés résineux. Les racines et les rhizomes peuvent concentrer les alcaloïdes ou les lactones dans des zones spécifiques, justifiant ainsi des coupes transversales pour l'examen du parenchyme et la collecte sélective des portions les plus riches.

La définition du stade de récolte repose sur la phénologie et les profils d'accumulation des métabolites, qui suivent des rythmes saisonniers et diurnes. Chez les plantes aromatiques, la récolte matinale, après la disparition de la rosée, tend à préserver les structures sécrétrices et à optimiser la récupération des huiles essentielles, tandis qu'une chaleur excessive peut entraîner la volatilisation des fractions légères. Les matières ligneuses tolèrent des plages de récolte plus larges, mais sont influencées par la dormance et le bourgeonnement, qui modifient l'humidité, la lignification et la teneur en tanins. Les feuilles présentent une variation significative entre la phase végétative active et la préfloraison , ce qui influe sur le rapport entre les acides phénoliques et les flavonoïdes. Les fleurs doivent être récoltées à pleine floraison si l'on recherche des composés volatils et des pigments stables, tandis que les bourgeons peuvent être préférables pour limiter l'oxydation lors du transport et du tri.

L'interprétation des indicateurs physiologiques facilite la prise de décisions optimales lors de la récolte. Une turgescence adéquate, une couleur typique sans chlorose ni nécrose, l'absence d'attaques fongiques et de ravageurs importantes, ainsi qu'une odeur caractéristique sans notes fermentaires sont des critères immédiats. Pour les feuilles, une rupture nette du pétiole et une texture ferme sans exsudation anormale suggèrent une maturité appropriée. Pour les fleurs, l'observation de la réceptivité du pollen et du stigmate indique une fonctionnalité optimale, bien que des fins cosmétiques ou phytothérapeutiques puissent privilégier des stades plus précoces afin de préserver certains précurseurs. Pour les fruits, le rapport matière sèche/ extrait sec L'acidité soluble , mesurable à l'aide d'un réfractomètre portable et d'un simple titrage, indique le point de prélèvement. Dans l'écorce, la facilité de détachement du phellogène et la coloration interne uniforme signalent des conditions optimales d'extraction.

La différenciation des espèces morphologiquement similaires réduit les risques toxicologiques et garantit la cohérence des résultats. Les genres aux feuilles similaires peuvent être distingués par des caractéristiques subtiles, telles que le type de trichomes, la présence de canaux laticifères ou l'odeur dégagée par friction, ce qui exige une formation sensorielle et une grande attention aux détails. Dans les environnements où plusieurs noms vernaculaires coexistent, les substitutions empiriques non validées ne doivent pas être acceptées, car le remplacement d'une espèce légèrement astringente par une espèce riche en alcaloïdes modifie le profil de sécurité d'un extrait. Pour les matières sèches provenant de tiers, l'inspection de la poudre (granulométrie, couleur et présence de fragments diagnostiques) minimise les risques de falsification et de mélanges non déclarés.

La cartographie interne des plantes par organe et stade de développement constitue un inventaire de référence précieux pour les décisions futures. Les relevés de terrain, qui croisent la phénophase avec des mesures de paramètres simples (humidité des tissus mesurée à l'aide d'une balance et d'une étuve, coloration standardisée grâce à des nuanciers, et rendement intrinsèque d'extrait en micro-lots ), permettent de constituer un historique fiable. La répétition de ces relevés au fil des saisons permet d'identifier les périodes de rendement optimal pour chaque organe et application, réduisant ainsi le gaspillage et stabilisant les performances des préparations suivantes.

Le tri final avant la récolte proprement dite consiste à éliminer les parties endommagées, celles présentant des signes importants d'herbivorie et les fragments contaminés par un excès de terre ou de matière organique en décomposition. Cette sélection permet d'éviter une charge microbienne excessive et de réduire le besoin d'interventions correctives ultérieures, préservant ainsi l'intégrité des structures d'intérêt. La coupe doit respecter la morphologie de l'organe afin de limiter les lésions tissulaires, car des plaies importantes accélèrent l'oxydation et altèrent la qualité de l'extrait. Chez les plantes vivaces, la pratique de la taille alternée des branches et le maintien d'une surface foliaire suffisante favorisent la régénération de la plante et préservent son profil chimique lors des cycles suivants.

L'intégration de ces critères dans un protocole d'identification, de sélection des parties et de marquage des stades de récolte transforme la collecte en une étape contrôlable et reproductible. La cohérence des données, l'observation rigoureuse et l'utilisation judicieuse des références taxonomiques constituent le socle technique sur lequel repose la qualité des extraits, permettant ainsi de gérer les différences naturelles entre les individus et les récoltes de manière prévisible et documentée.

L'évaluation de la fraîcheur commence par l'observation de l'état physiologique et de la vitalité du matériel végétal, en fonction de la date de récolte et du délai avant transformation. Les feuilles doivent présenter une turgescence marquée, une couleur vive et un arôme caractéristique lorsqu'on les frotte légèrement entre les doigts, sans aucune trace de rancissement, de fermentation ou de moisissure. Les fleurs doivent conserver une couleur intense et une structure intacte, sans signe de noircissement du tube floral ni d'abscission prématurée. Les jeunes tiges, rhizomes et racines doivent avoir une surface propre, sans mucilage indésirable ni odeur aigre ou terreuse, et une résistance mécanique uniforme à la coupe. Lorsque la transformation n'est pas immédiate, une réfrigération temporaire dans des récipients propres et une protection contre la lumière directe ralentissent la dégradation enzymatique, mais ne remplacent pas l'idéal, qui est de minimiser le délai entre la récolte et l'extraction. Dans tous les cas, la présence de zones noircies, de taches aqueuses, de tissus flasques et d'odeurs atypiques indique une sénescence et une perte de composés sensibles, compromettant ainsi l'efficacité de l'extrait.

La fraîcheur est également quantifiée indirectement par des indicateurs simples reflétant l'activité métabolique résiduelle. Sur les feuilles et les fleurs, la perte de leur couleur vert vif et la tendance au jaunissement prématuré suggèrent une dégradation des chlorophylles et des flavonoïdes. Sur les racines et l'écorce, une oxydation superficielle prononcée, perceptible par un noircissement irrégulier après une coupe récente, indique une exposition prolongée à l'air ou une manipulation inadéquate. De petits échantillons peuvent être macérés dans de l'éthanol de concentration définie afin de comparer l'intensité de la couleur et le profil aromatique à intervalles de temps standardisés, toujours dans le même récipient et avec le même volume. Ceci permet de détecter les lots qui conservent une extractibilité supérieure grâce à une fraîcheur optimale. La constance de ces tests internes constitue un historique précieux pour définir les limites d'acceptation et de rejet.

La teneur en humidité est cruciale pour la sécurité microbiologique, la stabilité du matériau et l'efficacité d'extraction. Dans le matériau frais, l'eau intracellulaire dilue le solvant hydroalcoolique et réduit sa concentration, affectant la solubilité des composés cibles et pouvant favoriser la prolifération microbienne si la teneur en alcool est inférieure au seuil minimal requis. Dans le matériau sec, un excès d'humidité favorise le développement de moisissures et les réactions d'hydrolyse qui dégradent les principes actifs. Des valeurs de référence facilitent les décisions pratiques. Les feuilles sèches donnent généralement de bons résultats avec une teneur en humidité d'environ 10 à 12 %, l'écorce et le bois entre 8 et 12 %, et les racines entre 10 et 14 %, valeurs toujours vérifiées par un échantillon représentatif. Dans la biomasse fraîche, on observe généralement des teneurs en humidité de 65 à 80 % pour les feuilles et de 75 à 90 % pour les fruits charnus. Ces valeurs permettent d'anticiper l'impact de l'eau de la plante sur la concentration finale de l'extrait.

La méthode gravimétrique est la méthode artisanale la plus fiable pour déterminer la teneur en humidité avec une précision suffisante pour la production industrielle. On pèse une portion homogénéisée du matériau, on enregistre sa masse initiale à l'état humide, on effectue un séchage contrôlé, et on répète la pesée jusqu'à obtention d'une masse constante. Pour les plantes médicinales non aromatiques, le séchage peut être réalisé dans une étuve ventilée à une température modérée qui ne dégrade pas les composés volatils, en prenant soin de noter la durée et la température. Pour les feuilles et les fleurs aromatiques riches en huiles essentielles, des températures plus basses et des temps de séchage plus longs permettent d'éviter les pertes excessives de composés volatils qui fausseraient le résultat. La teneur en humidité est exprimée en pourcentage de différence entre la masse initiale et la masse après séchage. En l'absence d'étuve, les déshydrateurs domestiques à température et débit d'air contrôlés peuvent offrir une répétabilité acceptable, à condition que l'opérateur standardise les plateaux, l'épaisseur des échantillons et le temps de séchage, et procède à un réétalonnage périodique avec un matériau de référence interne.

La détermination de la teneur en eau de la biomasse fraîche permet d'ajuster la concentration en alcool du solvant avant la macération. Si la plante contient 70 % d'eau et que le rapport plante/solvant choisi est de 1:5 en masse, une partie de cette eau migrera vers la phase hydroalcoolique, réduisant ainsi la concentration. Pour maintenir la concentration souhaitée, la contribution de l'eau de la plante est calculée et compensée par l'utilisation d'éthanol plus concentré, toujours dans les limites de sécurité pour les applications cosmétiques ou phytothérapeutiques. Un exemple pratique permet de mettre en œuvre ce concept. Lors de la macération de feuilles fraîches contenant 80 % d'eau et une masse végétale de 100 grammes, 80 grammes d'eau migreront vers la phase liquide. Si l'objectif est d'obtenir une phase finale proche de 60 % d'éthanol, il sera nécessaire d'utiliser dès le départ une quantité d'éthanol plus concentrée, afin que la somme de l'alcool anhydre présent et de l'eau totale corresponde à la concentration désirée après équilibre. Ce raisonnement simple, appliqué à l'aide d'un tableur dédié et d'un enregistrement pour chaque lot, permet d'éviter les extraits trop dilués.

L'intégrité morphologique garantit la présence de la partie appropriée de la plante et l'absence d'altération de ses microstructures par broyage, infestation ou mélange avec des matières étrangères. Les feuilles doivent présenter un limbe intact, des nervures préservées et ne pas avoir subi de broyage excessif générant de la poussière végétale, car les particules très fines entravent la filtration et peuvent intensifier l'extraction de tanins indésirables. Les fleurs doivent conserver un calice, une corolle et des étamines reconnaissables lorsque le produit est destiné à des préparations nécessitant des composés spécifiques de ces structures. L'écorce et le bois doivent présenter des fibres intactes et une organisation anatomique évidente, sans délamination due à un séchage agressif. Les rhizomes et les racines doivent conserver un cortex et un cylindre central discernables à l'œil nu, avec des coupes nettes et une surface exempte de fissures témoignant d'une dessiccation extrême.

La confirmation morphologique réduit les risques de falsification et de confusion entre espèces apparentées. Dans la mesure du possible, l'inspection est réalisée à la loupe pour observer les trichomes, les points glandulaires et les nervures qui différencient les espèces et les chémotypes . Dans les matières sèches provenant de tiers, la présence de tiges alors que seules des feuilles ont été commandées, de fragments d'autres espèces, ou encore de sable et de cailloux, indique des erreurs de tri. Le pourcentage interne de matières étrangères doit être défini comme la limite maximale acceptable et appliqué par un simple échantillonnage statistique : l'échantillon est étalé sur une surface claire, divisé en quadrants égaux, deux quadrants sont sélectionnés aléatoirement et inspectés intégralement. Le résultat est ensuite extrapolé à l'ensemble du lot et documenté par des photographies.

L'intégrité est également liée à l'absence de dommages biotiques et abiotiques. Des perforations alignées, de fines toiles et des taches noires reliées par du mycélium sont des signes de parasites ou de champignons qui disqualifient le lot. Des bords brûlés indiquent une exposition thermique insuffisante, tandis que des taches d'eau révèlent un séchage inadéquat avant l'emballage. Dans les racines et l'écorce, la présence de terre adhérente modifie le taux d'humidité et ajoute des minéraux indésirables à l'extrait. Un pré-nettoyage à sec à l'aide de brosses, suivi d'une inspection visuelle, préserve la morphologie tout en éliminant les impuretés sans excès d'humidité.

L'interaction entre fraîcheur, humidité et morphologie détermine la capacité d'extraction réelle du lot et permet d'anticiper les problèmes opérationnels. La matière fraîche et intacte tend à libérer des composés moins dégradés, mais exige un calcul de classification rigoureux en raison de la présence d'eau végétale. La matière sèche à humidité contrôlée facilite la standardisation et la filtration, mais nécessite une vérification morphologique plus minutieuse afin d'exclure toute adultération et toute perte de structures clés. L' enregistrement rigoureux des observations organoleptiques, des taux d'humidité et des macrophotographies de référence pour chaque espèce constitue un dossier interne qui stabilise la qualité dans le temps et permet d'identifier les écarts dès réception de la matière.

La récolte éthique repose sur la prise de conscience que chaque plante fait partie d'un écosystème qui doit continuer à fonctionner après son prélèvement. Cela implique de planifier le point de récolte, d'obtenir l'autorisation préalable du propriétaire foncier ou de l'organisme de conservation, de vérifier la présence d'espèces protégées et d'évaluer l'état de la population locale. L'intervention doit préserver les plantes mères, garantir la diversité génétique et maintenir la capacité de régénération. Concrètement, cela signifie ne récolter que ce qui est nécessaire pour le lot prévu, répartir la récolte sur plusieurs points afin d'éviter l'épuisement d'une seule zone centrale et éviter de prélever des plantes entières lorsque les feuilles, les fleurs ou les branches suffisent à l'extraction. Les zones en bordure de route, les zones industrielles et les terrains sujets au ruissellement de polluants doivent être exclus, car la bioaccumulation de métaux et d'hydrocarbures compromet la sécurité de la préparation.

L'identification botanique doit être effectuée avant la coupe, avec confirmation du genre et de l'espèce à l'aide de clés d'identification fiables et, si possible, par comparaison avec des spécimens séchés ou par consultation de spécialistes. La confusion entre espèces morphologiquement similaires est fréquente et peut introduire des alcaloïdes indésirables, des lactones irritantes ou des concentrations incompatibles de coumarines, affectant ainsi l'efficacité et l'innocuité des extraits. La traçabilité des lots doit consigner la date, le lieu avec ses coordonnées approximatives, le stade phénologique observé , la partie prélevée et les conditions climatiques, créant ainsi un historique permettant de reproduire des profils phytochimiques de haute qualité et, simultanément, de suivre l'impact sur la population végétale au fil du temps.

La coupe et la récolte nécessitent des instruments propres et tranchants, désinfectés à l'alcool approprié et séchés avant utilisation afin de prévenir toute contamination par des agents pathogènes. Les branches doivent être coupées au-dessus des nœuds permettant la repousse, les racines ne doivent être prélevées que lorsque l'espèce se propage vigoureusement par voie végétative, et l'écorce doit être prélevée par segments alternés, jamais en anneaux complets qui interrompent la circulation de la sève. En milieu humide, le matériel doit être immédiatement aéré dans des sacs respirants et protégé de la lumière directe du soleil, car la dégradation oxydative débute dès la coupe et réduit la disponibilité des composés volatils et phénoliques importants pour le profil de l'extrait.

La culture à domicile offre une solution techniquement fiable pour réduire la pression sur les populations indigènes et standardiser la qualité des matières premières. Le choix des espèces doit tenir compte du climat local, de la photopériode et de l'espace disponible, en privilégiant les variétés ayant fait leurs preuves en matière d'innocuité et pour lesquelles des semences certifiées ou des plants sains sont disponibles. Le sol doit présenter une bonne structure, une matière organique stable et un drainage adéquat. Des corrections, basées sur des analyses chimiques, sont nécessaires pour éviter un excès d'azote qui dilue les métabolites secondaires. Le pH doit également être ajusté à la plage optimale pour chaque espèce, car l'extraction des flavonoïdes, des tanins et des terpènes dépend de la physiologie de la plante et du microenvironnement racinaire.

L'irrigation doit être planifiée de manière à maintenir un équilibre hydrique stimulant la synthèse de composés de défense sans induire de stress hydrique permanent. Des cycles de sécheresse contrôlés, fréquents chez les espèces méditerranéennes riches en huiles essentielles, peuvent accroître la concentration de monoterpènes, tandis que les légumes fragiles destinés à la production d'extraits aqueux réagissent mieux à des régimes stables préservant les protéines et les polysaccharides solubles. L'eau utilisée doit être exempte de chlore en excès et de contaminants ; une simple filtration ou un repos dans un récipient ouvert avant application est préférable, ce qui évite de perturber les micro-organismes bénéfiques du sol et de nuire à l'arôme du produit récolté.

La gestion phytosanitaire doit privilégier les barrières physiques, la biodiversité des planches de culture et les ennemis naturels, en réservant les interventions aux situations confirmées par le suivi phytosanitaire. Lorsqu'un apport est inévitable, même pour les intrants autorisés en agriculture biologique, il est impératif de respecter les délais de sécurité avant la récolte, car les résidus peuvent se co-extraire dans des solvants lipophiles ou hydroalcooliques et altérer la stabilité et les qualités organoleptiques de l'extrait. La rotation des cultures, l'incorporation d'engrais verts et l'utilisation judicieuse de composts organiques mûrs contribuent à un équilibre en micronutriments, ce qui influe directement sur la biosynthèse des composés phénoliques et des alcaloïdes dans les feuilles et l'écorce.

La saisonnalité détermine le moment optimal de la récolte en alignant la phénologie et les objectifs phytochimiques. Les feuilles présentent généralement des concentrations plus élevées de composés photoprotecteurs durant les périodes de fort rayonnement, les fleurs concentrent des composés volatils spécifiques à l'approche de l'anthèse et les racines accumulent des réserves après la sénescence des parties aériennes. L'observation du cycle annuel de l'espèce, incluant la germination, la floraison et la fructification, permet de définir des périodes de récolte récurrentes offrant une probabilité accrue de concentration des marqueurs recherchés. Dans les régions aux saisons thermiques bien marquées, les variations de température et de photopériode modulent les voies de biosynthèse, influençant ainsi l'extraction et justifiant l'utilisation de calendriers spécifiques à chaque espèce plutôt que de dates fixes.

L'heure de la journée influe sur la composition du produit et doit être standardisée pour garantir la reproductibilité des résultats. Les feuilles riches en terpènes volatils présentent souvent des pics de concentration en fin de matinée par temps sec et stable, tandis que les parties riches en alcaloïdes et en phénols conservent des profils plus constants. Toutefois,